自然杀伤细胞(NK)和淋巴因子激活杀伤细胞(LAK)的杀伤功能

撰稿 金伯泉


  (一) 原理
  NK细胞存在于人或动物外周血、脾脏、淋巴结和骨髓中,能杀伤某些肿瘤细胞、病毒感染靶细胞,无需抗原或有丝分裂原刺激,亦不依赖抗体或补体,在机体杀伤肿瘤、防御感染及免疫调节中发挥重要作用。
  LAK是NK或T细胞在体外高剂量IL-2诱导下,获得能杀伤NK抵抗的肿瘤细胞的功能,在过继免疫治疗肿瘤中已得到广泛的应用。
  通过将同位素51Cr掺入到NK的靶细胞K562(红白细胞白血病细胞)或LAK的靶细胞LiBr(黑色素瘤细胞),按一定细胞比例与效应细胞(NK或LAK)孵育4小时,根据细胞上清中靶细胞被杀伤后所释放的51Cr水平计算出杀伤细胞的杀伤活性。
  (二) 方法
  1. 效应细胞的制备
  NK功能效应细胞可取静止的的PBMC,或经不同细胞因子诱导的PBMC。
  LAK功能的效应细胞通常将PBMC或肿瘤浸润淋巴细胞(TIL)或体液(癌性胸腹水)中纯化的淋巴细胞(1×106/ml)在含有高剂量IL-2(200~1000μ/ml)的10%FCS RPMI1640 诱导2~5天而成。
  2. 杀伤试验
  主要有4h51Cr释放法和3H-TdR释放法,前者要求51Cr质量好,犕,位素半衰期较短,操作所需时间短;后者需要无菌操作,所需时间较长。
  (1) 51Cr4小时释放试验
         收获处于对数生长期的靶细胞(K562,LiBr等)
         洗涤后调整细胞浓度为2×106/ml
                  ↓
         取1×106细胞(0.5ml),加Na2 51CrO4 100μci
         37℃孵育2~3h,每15min轻轻振摇一次
                   ↓
         用10%FCS RPMI1640洗涤3次,每次800rpm,5min
     ↓
           重悬细胞浓度1×105/ml
                   ↓
        96孔V型或U型培养板中,每孔加100μl(1×104细胞)
                 每份3个复孔
                   ↓
       每孔加入100μl不同细胞浓度的效应细胞,最大释放组加入100μl
       1%TritonX-100;自然释放组加100μl完全培养基
                   ↓
              200g 离心1min
                  ↓
             37℃、CO2孵箱 4h
                  ↓
              200g 离心 1min
                  ↓
           每孔取出100μl上清,γ计数仪上测定cpm值
  计算
                 实验组cpm-自然释放cpm
特异性杀伤率(%)=─────────────
                最大释放cpm-自然释放cpm
  (2) 3H-TdR释放试验
        收获处于对数生长期的靶细胞(K562、LiBr等)洗涤后
        调整细胞浓度为2×106/ml,加3H-TdR 20μci
                    ↓
                37℃孵育2~3h
                    ↓
         用10%FCS RPMI1640洗涤3次,每次800rpm, 5min
         调整细胞浓度为1×105/ml
                    ↓
        96孔U型或平底培养板中,每孔加100μl(1×104细胞)
        每份3个复孔
                    ↓
        每孔加入100μl不同细胞浓度的效应细胞,最大释放组加
        100μl 1% TritonX-100,自然释放组加100μl完全培
        养基
                    ↓
            CO2孵箱培养18~24h
                    ↓
        每孔吸出100μl上清,加入胰蛋白酶(终浓度0.15%)
        和DNA酶(终浓度为0.0125%)
                    ↓
       继续孵育30min
                    ↓
              用细胞收集仪收获于玻璃纤维纸上
                    ↓

         干燥后,移入液闪瓶中,加入1ml闪烁液,β液
         闪仪中测cpm值
  计算
               实验组cpm
  特异性释放率(%)=( 1- ────── )×100%
               对照组cpm
  (三) 试剂和器材
  1. 细胞系: K562, LiBr
  2. 10%FCS RPMI1640
  3. rHu IL-2
  4. 3H-TdR, 51Cr
  5. 培养瓶、培养板,CO2孵箱
  6. β-液闪仪,γ-计数仪
  (四) 注意事项:
  1. 每次试验最好取3~4个不同效应细胞/靶细胞比例,常用效靶比例为100∶1、50∶1,25∶1,12.5∶1。
  2. 诱导LAK细胞过程中要注意无菌操作。
  3. 避免同位素污染。
  根据实验需要,可采用纯化的NK细胞作为效应细胞,牫#用Percoll不连续密度梯度离心纯化NK细胞(见表)。
        用Percoll不连续密度梯度离心法纯化人NK细胞
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                     梯  度  顺  序
         加样细胞 ────────────────────────
                1     2     3     4     5
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Percoll浓度(%)  ──    40.0 42.5 45.0 47.5 50.0
细胞回收率(%)   100 1.6 3.5 8.5 28.5 21.5
LGL (%) 12 5 82 74 7 2
lu/107 细胞     42 16 192 143 4 1
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  1个溶解单位(Lytic unit, LU)为一定效应细胞30%溶解(杀伤)5×103靶细胞(K562)的水平。
  如需进一步纯化LGL,可通过除去具有高亲和性羊红细胞受体细胞(T细胞),因为NK细胞只具有低亲和性的绵羊红细胞受体(ER)。具体方法是将Percoll分离的位于第2、牫梯度的细胞洗涤后调整细胞浓度为5×106/ml,移入试管,加入2mlFCS和2ml1×108/mlSRBC,100g离心5min,29℃孵育1h,轻轻重悬细胞,叠加于3ml Ficoll上,400g室温下离心30min界面不形成花环的细胞即为LGL,纯度可>90%。
  在用PBMC作为效应细胞进行NK活性测定时,如想除去PBMC悬液中混杂的红细胞,可用蒸馏水低渗的方法除去红细胞,而不用NH4Cl方法,因为后者可降低NK功能。
  在小鼠NK实验中必须注意小鼠的品系和周龄,不同小鼠系NK活性有明显的差别(表)
           不同小鼠品系NK活性差别
  NK高水平系  CBA/J   C3H/J   C57BL/6   C57BL/10   DBA2
  NK低水平系  A/Sn A/J AKR SJL BALB/c
  3周以内或超过3个月以上小鼠的NK水平一般很低。